[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: معرفي مجله :: آخرين شماره :: آرشيو مقالات :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
آرشیو مقالات::
در باره نشریه::
هیئت تحریریه::
اعضای دفتر مجله::
بانک‌ها و نمایه‌نامه‌ها::
ثبت نام::
راهنمای نگارش مقاله::
ارسال مقاله::
فرم تعهدنامه::
راهنما کار با وب سایت::
برای داوران::
پرسش‌های متداول::
فرایند ارزیابی و انتشار مقاله::
در باره کارآزمایی بالینی::
اخلاق در نشر::
در باره تخلفات پژوهشی::
اخبار::
لینکهای مفید::
تسهیلات پایگاه::
آشنایی با امور دفترمجله::
تماس با ما::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
Google Scholar

Citation Indices from GS

AllSince 2021
Citations86793102
h-index3517
i10-index25771
:: ::
برگشت به فهرست مقالات برگشت به فهرست نسخه ها
اثر کروسین بر شاخص‌های استرس اکسیداتیو و التهاب در آسیب حاد کلیوی ناشی از لیپوپلی‌ساکارید در موش‌های کوچک آزمایشگاهی نر نژاد C57BL/6
پریناز زارع1 ، معین فرهنگ نسب1 ، مهدیه طاهری2 ، مهرداد روغنی*3
1- دانش‌آموخته دکتری حرفه‌ای در رشته پزشکی عمومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران.
2- دکتری تخصصی فیزیولوژی، مرکز تحقیقات نوروفیزیولوژی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران.
3- استاد فیزیولوژی، مرکز تحقیقات نوروفیزیولوژی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران. ، mroghani@shahed.ac.ir
چکیده:   (1338 مشاهده)

زمینه و هدف: لیپوپلی‌ساکارید (Lipopolysaccharide: LPS) با دوز بالا به عنوان یک اندوتوکسین منجر به ایجاد مدل آسیب حاد کلیه (Acute kidney injury: AKI) در جوندگان می‌شود. کروسین یک ترکیب کاروتنوئیدی در میان ترکیبات فعال زعفران با اثرات دارویی فراوان مانند فعالیت‌های آنتی‌اکسیدانی و ضدالتهابی است. این مطالعه به منظور تعیین اثر کروسین بر شاخص‌های استرس اکسیداتیو و التهاب در آسیب حاد کلیوی ناشی از لیپوپلی‌ساکارید در موش‌های کوچک آزمایشگاهی نر نژاد C57BL/6 انجام شد.

روش بررسی: این مطالعه تجربی روی 24 سر موش کوچک آزمایشگاهی نر نژاد C57BL/6 در محدوده وزنی 23-19 گرم و سن 10-8 هفته در آزمایشگاه مطالعات تجربی دانشگاه شاهد انجام شد. حیوانات به طور تصادفی به 4 گروه 6 تایی شامل گروه کنترل، گروه لیپوپلی‌ساکارید و گروه‌های لیپوپلی‌ساکارید تحت تیمار با کروسین در دوز 10 و 50 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن تقسیم شدند. در گروه‌های تحت تیمار، تجویز داروی کروسین با دوزهای 10 و 50 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن حل شده با حلال کالیفور به صورت گاواژ در دو نوبت با فاصله زمانی 24 ساعت تا یک ساعت قبل از تزریق لیپوپلی‌ساکارید انجام شد. برای القا آسیب حاد کلیه، لیپوپلی‌ساکارید حل شده در نرمال سالین به میزان 10 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن یک ساعت بعد از تجویز آخرین نوبت کروسین به صورت داخل صفاقی به حیوانات تزریق شد. بیومارکرهای عملکرد کلیه و استرس‌اکسیداتیو و همچنین فاکتورهای التهابی و ضد التهابی مورد ارزیابی قرار گرفتند.

یافته‌ها: در گروه لیپوپلی‌ساکارید تحت تیمار با کروسین در دوز 50 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن در مقایسه با گروه لیپوپلی‌ساکارید، سطح سرمی کراتینین (0.54±0.05, P<0.01) و BUN (25.80±2.40, P<0.05) کاهش معنی‌داری یافت و نیز شاخص مرتبط با استرس‌اکسیداتیو کلیوی شامل MDA (2.75±0.22) به‌طور معنی‌داری کاهش یافت و فعالیت SOD (5.57±0.36) به‌طور معنی‌داری افزایش یافت (P<0.05). همچنین تیمار کروسین سبب کاهش معنی‌دار TNF-α (41.80±3.50, P<0.01) و افزایش IL-10 (52.90±3.30, P<0.05) در مقایسه با گروه لیپوپلی‌ساکارید گردید.

نتیجه‌گیری: کروسین می‌تواند با مهار استرس اکسیداتیو و عوامل التهابی بافت کلیه از آسیب حاد کلیوی ناشی از لیپوپلی‌ساکارید جلوگیری نماید.

واژه‌های کلیدی: لیپوپلی‌ساکارید، آسیب حاد کلیه، کروسین، استرس ‌اکسیداتیو، التهاب
Article ID: Vol28-11
متن کامل [PDF 709 kb]   (191 دریافت)    
نوع مطالعه: تحقيقي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
* نشانی نویسنده مسئول: تهران، خیابان کارگر شمالی، بین خیابان فرصت و نصرت، شماره 1471، ساختمان مراکز تحقیقاتی دانشگاه شاهد، مرکز تحقیقات نورفیزیولوژی، تلفن 66415308-021
فهرست منابع
1. Gonsalez SR, Cortês AL, Silva RCD, Lowe J, Prieto MC, Silva Lara LD. Acute kidney injury overview: From basic findings to new prevention and therapy strategies. Pharmacol Ther. 2019 Aug;200:1-12. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2019.04.001. [DOI] [PubMed]
2. Zhang H, Chen MK, Li K, Hu C, Lu MH, Situ J. Eupafolin nanoparticle improves acute renal injury induced by LPS through inhibiting ROS and inflammation. Biomed Pharmacother. 2017 Jan;85:704-11. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2016.11.083. [DOI] [PubMed]
3. Chawla LS, Kimmel PL. Acute kidney injury and chronic kidney disease: an integrated clinical syndrome. Kidney Int. 2012 Sep;82(5):516-24. https://doi.org/10.1038/ki.2012.208. [DOI] [PubMed]
4. Makris K, Spanou L. Acute Kidney Injury: Definition, Pathophysiology and Clinical Phenotypes. Clin Biochem Rev. 2016 May;37(2):85-98. [PubMed]
5. He FF, Wang YM, Chen YY, Huang W, Li ZQ, Zhang C. Sepsis-induced AKI: From pathogenesis to therapeutic approaches. Front Pharmacol. 2022 Sep;13:981578. https://doi.org/10.3389/fphar.2022.981578. [DOI] [PubMed]
6. Gabarin RS, Li M, Zimmel PA, Marshall JC, Li Y, Zhang H. Intracellular and Extracellular Lipopolysaccharide Signaling in Sepsis: Avenues for Novel Therapeutic Strategies. J Innate Immun. 2021;13(6):323-32. https://doi.org/10.1159/000515740. [DOI] [PubMed]
7. Liu X, Lu J, Liao Y, Liu S, Chen Y, He R, et al. Dihydroartemisinin attenuates lipopolysaccharide-induced acute kidney injury by inhibiting inflammation and oxidative stress. Biomed Pharmacother. 2019 Sep;117:109070. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2019.109070. [DOI] [PubMed]
8. Anders HJ, Banas B, Schlöndorff D. Signaling danger: toll-like receptors and their potential roles in kidney disease. J Am Soc Nephrol. 2004 Apr;15(4):854-67. https://doi.org/10.1097/01.asn.0000121781.89599.16. [DOI] [PubMed]
9. Peerapornratana S, Manrique-Caballero CL, Gómez H, Kellum JA. Acute kidney injury from sepsis: current concepts, epidemiology, pathophysiology, prevention and treatment. Kidney Int. 2019 Nov;96(5):1083-99. https://doi.org/10.1016/j.kint.2019.05.026. [DOI] [PubMed]
10. Kim K, Leem J. Hispidulin Ameliorates Endotoxin-Induced Acute Kidney Injury in Mice. Molecules. 2022 Mar;27(6):2019. https://doi.org/10.3390/molecules27062019. [DOI] [PubMed]
11. Doi K, Leelahavanichkul A, Yuen PS, Star RA. Animal models of sepsis and sepsis-induced kidney injury. J Clin Invest. 2009 Oct;119(10):2868-78. https://doi.org/10.1172/jci39421. [DOI] [PubMed]
12. Korani S, Korani M, Sathyapalan T, Sahebkar A. Therapeutic effects of Crocin in autoimmune diseases: A review. Biofactors. 2019 Nov;45(6):835-43. https://doi.org/10.1002/biof.1557. [DOI] [PubMed]
13. Baradaran Rahim V, Khammar MT, Rakhshandeh H, Samzadeh-Kermani A, Hosseini A, Askari VR. RETRACTED ARTICLE: Crocin protects cardiomyocytes against LPS-Induced inflammation. Pharmacol Rep. 2019 Dec;71(6):1228-34. https://doi.org/10.1016/j.pharep.2019.07.007. [DOI] [PubMed]
14. Ghofrani S, Joghataei M-T, Afshin-Majd S, Baluchnejadmojarad T, Roghani M. [Crocin, a bioactive constituent of Crocus sativus, alleviates trimethyltin-induced cognitive deficits through down-regulation of hippocampal apoptosis and oxidative stress]. Journal of Basic and Clinical Pathophysiology. 2022;10(1):38-44. https://doi.org/10.22070/jbcp.2022.16405.1160. [Link] [DOI]
15. Wang J, Kuai J, Luo Z, Wang W, Wang L, Ke C, et al. Crocin attenuates lipopolysacchride-induced acute lung injury in mice. International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 2015;8(5):4844-50. [Link]
16. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976 May;72:248-54. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90527-3. [DOI] [PubMed]
17. Sedaghat R, Roghani M, Khalili M. Neuroprotective effect of thymoquinone, the nigella sativa bioactive compound, in 6-hydroxydopamine-induced hemi-parkinsonian rat model. Iran J Pharm Res. 2014;13(1):227-34. [PubMed]
18. Majithiya JB, Balaraman R. Metformin reduces blood pressure and restores endothelial function in aorta of streptozotocin-induced diabetic rats. Life Sci. 2006 Apr;78(22):2615-24. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2005.10.020. [DOI] [PubMed]
19. Kiasalari Z, Roghani M, Khalili M, Rahmati B, Baluchnejadmojarad T. Antiepileptogenic effect of curcumin on kainate-induced model of temporal lobe epilepsy. Pharm Biol. 2013 Dec;51(12):1572-78. https://doi.org/10.3109/13880209.2013.803128. [DOI] [PubMed]
20. Claiborne A. Catalase activity. In: Greenwald RA. CRC Handbook of Methods for Oxygen Radical Research. Boca Raton: CRC Press. 1985; pp:283-84. [Link]
21. Sureshbabu A, Ryter SW, Choi ME. Oxidative stress and autophagy: crucial modulators of kidney injury. Redox Biol. 2015;4:208-14. https://doi.org/10.1016/j.redox.2015.01.001. [DOI] [PubMed]
22. Chen Y, Jin S, Teng X, Hu Z, Zhang Z, Qiu X, et al. Hydrogen Sulfide Attenuates LPS-Induced Acute Kidney Injury by Inhibiting Inflammation and Oxidative Stress. Oxid Med Cell Longev. 2018 Jan;2018:6717212. https://doi.org/10.1155/2018/6717212. [DOI] [PubMed]
23. Pavlakou P, Liakopoulos V, Eleftheriadis T, Mitsis M, Dounousi E. Oxidative Stress and Acute Kidney Injury in Critical Illness: Pathophysiologic Mechanisms-Biomarkers-Interventions, and Future Perspectives. Oxid Med Cell Longev. 2017;2017:6193694. https://doi.org/10.1155/2017/6193694. [DOI] [PubMed]
24. Zhao J, Bi W, Xiao S, Lan X, Cheng X, Zhang J, et al. Neuroinflammation induced by lipopolysaccharide causes cognitive impairment in mice. Sci Rep. 2019 Apr;9(1):5790. https://doi.org/10.1038/s41598-019-42286-8. [DOI] [PubMed]
25. Zhang C, Walker LM, Mayeux PR. Role of nitric oxide in lipopolysaccharide-induced oxidant stress in the rat kidney. Biochem Pharmacol. 2000 Jan;59(2):203-209. https://doi.org/10.1016/s0006-2952(99)00324-x. [DOI] [PubMed]
26. Beheshti F, Norouzi F, Abareshi A, Khazaei M, Alikhani V, Moussavi S, et al. Nigella sativa prevented liver and renal tissue damage in lipopolysaccharide-treated rats. Saudi J Kidney Dis Transpl. 2018 May-Jun;29(3):554-66. https://doi.org/10.4103/1319-2442.235184. [DOI] [PubMed]
27. Kang S, Chen T, Hao Z, Yang X, Wang M, Zhang Z, et al. Oxymatrine Alleviates Gentamicin-Induced Renal Injury in Rats. Molecules. 2022 Sep;27(19):6209. https://doi.org/10.3390/molecules27196209. [DOI] [PubMed]
28. Altinoz E, Oner Z, Elbe H, Cigremis Y, Turkoz Y. Protective effects of saffron (its active constituent, crocin) on nephropathy in streptozotocin-induced diabetic rats. Hum Exp Toxicol. 2015 Feb;34(2):127-34. https://doi.org/10.1177/0960327114538989. [DOI] [PubMed]
29. El-Fawal R, El Fayoumi HM, Mahmoud MF. Diosmin and crocin alleviate nephropathy in metabolic syndrome rat model: Effect on oxidative stress and low grade inflammation. Biomed Pharmacother. 2018 Jun;102:930-37. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.03.162. [DOI] [PubMed]
30. Rajabalizadeh R, Ghasemzadeh Rahbardar M, Razavi BM, Hosseinzadeh H. Renoprotective effects of crocin against colistin-induced nephrotoxicity in a rat model. Iran J Basic Med Sci. 2024;27(2):151-56. https://doi.org/10.22038/ijbms.2023.72808.15843. [DOI] [PubMed]
31. Liu H, Cheng H, Wang H, Wang Q, Yuan J. Crocin improves the renal autophagy in rat experimental membranous nephropathy via regulating the SIRT1/Nrf2/HO-1 signaling pathway. Ren Fail. 2023;45(2):2253924. https://doi.org/10.1080/0886022x.2023.2253924. [DOI] [PubMed]
32. Mard SA, Azad SM, Ahangarpoor A. Protective Effect of Crocin on Gastric Mucosal Lesions Induced by Ischemia-Reperfusion Injury in Rats. Iran J Pharm Res. 2016;15(Suppl):93-99. [PubMed]
33. Altinoz E, Cetinavci D, Abdulkareem Aljumaily SA, Elbe H, Cengil O,et al. Crocin, the compound of the dried stigma of Crocus sativus L (saffron), restores doxorubicin-induced disturbances in kidney functioning, oxidative stress, inflammation, renal tissue morphology and TGF-β signalling pathways. Nat Prod Res. 2025 Aug;39(16):4609-22. https://doi.org/10.1080/14786419.2024.2344180. [DOI] [PubMed]
34. Abou-Hany HO, Atef H, Said E, Elkashef HA, Salem HA. Crocin mediated amelioration of oxidative burden and inflammatory cascade suppresses diabetic nephropathy progression in diabetic rats. Chem Biol Interact. 2018 Mar;284:90-100. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2018.02.001. [DOI] [PubMed]
35. Yarijani ZM, Pourmotabbed A, Pourmotabbed T, Najafi H. Crocin has anti-inflammatory and protective effects in ischemia-reperfusion induced renal injuries. Iran J Basic Med Sci. 2017 Jul;20(7):753-59. https://doi.org/10.22038/ijbms.2017.9005. [DOI] [PubMed]
36. Masalegoo A, Pirzad Jahromi G, Sahraei H, Alimohamadi Y. [Investigating the Effects of Crocin- Nanoparticle on Inflammatory Factors and Serum Oxidative Stress in the Chronic Stress Model of Male Rats]. Journal of Military Medicine. 2024;26(4):2409-19. https://doi.org/10.30491/jmm.2024.1006752.1239. [Article in Persian] [DOI] [PubMed]
ارسال پیام به نویسنده مسئول


XML   English Abstract   Print



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
برگشت به فهرست مقالات برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی گرگان Journal of Gorgan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.09 seconds with 36 queries by YEKTAWEB 4766
Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons — Attribution-NonCommercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0)